CDS é a sigla para Chromatography Data System, isto é, são softwares necessários para a aquisição de dados cromatográficos, realizando o controle dos módulos do sistema e o também o controle das condições do método cromatográfico. Além disso, esses softwares são necessários para processar os dados adquiridos, permitindo, resumidamente:
integrar os picos cromatográficos, fornecendo o tempo de retenção, área e altura do pico, largura do pico e outros parâmetros importantes (como parâmetros cromatográficos de adequação de sistema – eficiência, resolução, assimetria ou tailing factor, seletividade
identificar os picos cromatográficos (sem o acoplamento com o espectrômetro de massa a substância é identificada apenas pela concordância entre o tempo de retenção da mesma substância injetada como padrão em relação ao tempo de retenção da substância na amostra)
Picos cromatográficos integrados e identificados após a aquisição de dados cromatográficos.
realizar a quantificação da substância, atendendo o procedimento da calibração com padrões para posterior quantificação da amostra (a substância também pode ser quantificada com a técnica de porcentagem de área em relação a área total, sem uso de calibração interna, externa ou de adição de padrão, mas este procedimento tem utilidades restritas)
Ilustração exemplificando a obtenção de uma curva de calibração externa para permitir a quantificação de substâncias.
dependendo do detector, outras opções importantes de processamento estarão disponíveis, como a obtenção de espectros de absorção no ultravioleta (e o importante cálculo da pureza do pico). Neste caso o detector deve ser um DAD ou PDA (detector de arranjo de diodos). Também é possível obter o espectro de massa, para investigação e caracterização ou confirmação de estruturas químicas, com o acoplamento com um espectrômetro de massas.
Ilustração para obtenção de espectros de absorção UV de cada pico cromatográfico
Ilustração de cálculo de pureza de pico, utilizando o conceito de homogeneidade espectral.
Exemplo de cálculo de parâmetro de system suitability (adequação de sistema).
Cada marca de sistema cromatográfico tem, em geral, um CDS, porém, algusn CDS´s se tornaram mais interessantes a ponto de serem empregados com equipamentos de fabricantes diferentes. Alguns dos principais CDS´s estão abaixo e seus fornecedores/detentores de licença de comercialização também:
Empower – Waters
OpenLab – Agilent (Ezchrom também é uma opção)
LabSolution – Shimadzu
Thermo/Dionex – Chromeleon
Kauner – Clarity Chrom
Existem também CDS que podem ser utilizados em qualquer equipamento e são independentes dos fabricantes de sistemas cromatográficos.
Entre todas as opções, os dois softwares que mais se destacam são o Empower e o OpenLab por estarem presentes em maior quantidade de equipamentos, serem mais conhecidos e abrangentes. Destes dois, pode-se considerar o Empower mais versátil, possibilitando muitas customizações de processamento e de relatórios, mas isso o torna mais complicado de ser “dominado” e entendido em amplitude.
A cromatografia é a técnica mais utilizada e cobrada para atuação profissional em diferentes áreas laboratoriais e industriais e os CDS são a “alma” da execução da análise cromatográfica!
Sem dominá-los torna-se impossível alcançar a excelência necessária para a análise cromatográfica. Sim, precisamos nos especializar no uso dos software para aquisição e processamento de dados cromatográficos.
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O termo homocedasticidade ficou conhecido com o advento dos atuais requisitos de validação de métodos analíticos, nos quais torna-se necessário verificar e comprovar a homocedasticidade dos dados (dentro dos testes de linearidade).
A ideia é garantir que no intervalo de concentração da faixa de trabalho, os diferentes níveis de concentração apresentam a mesma variância (HOMO= mesma, CEDASTICIDADE= qualidade de cedástico – relativo a variância). Se comprovada a homocedasticidade podemos adotar o modelo de mínimos múltiplos quadrados ordinários (MMQO) para o ajuste dos dados, sendo este modelo mais simples para obtenção de dados de regressão e demais parâmetros da linearidade.
Para verificar e comprovar a homocedasticidade torna-se necessário aplicar testes estatísticos, como:
Teste de Cochran (questionável devido a quantidade reduzida de replicatas – O teste de Cochran compara as variâncias de cada ponto da curva de calibração, mas, em geral, temos poucas réplicas de cada ponto para calcularmos as variâncias, portanto o teste de Cochran pode não permitir uma avaliação apropriada para a homocedasticidade no contexto da linearidade
Teste Breuch-Pagan (baseado no teste multiplicador de Lagrange) – mais robusto
Teste de Goldfeld-Quandt (entre as limitações deste teste está a exigência de que a amostra seja relativamente grande).
Teste de Brown-Forsythe (também utilizado como Levene) é utilizado para o teste de igualdade de variâncias, porém em certos casos utilizamos para testar a homoscedasticidade dos resíduos no caso de uma variável explicativa. Este teste considerara a mediana ou 10 % da tri-média (mais robustas), como alternativa para a média no cálculo dos desvios absolutos, sendo menos sensível a desvios de normalidade. Levene propôs uma estatística para dados balanceados, que foi generalizada posteriormente para dados desbalanceados à partir de uma ANOVA (1 fator) entre os grupos, em que cada observação foi substituída pelo seu desvio absoluto da sua média do grupo.
Na execução destes testes devemos realizar a verificação de testes de hipóteses:
Vale ressaltar que a ausência de homoscedasticidade é chamada de heteroscedasticidade. Com isso, testamos as hipóteses:
Teste de hipóteses avaliada com 95% de intervalo de confiança (nível de significância de 5%).
Hipótese Nula: H0
Hipótese H1 (alternativa): H1
Se o teste estatístico confirmar que não existe evidência para rejeitar a H0, consideramos os dados homocedásticos e continuamos a executar verificações para confirmação (gráfico de resíduos versus valores ajustados, testes de normalidade de resíduos – por exemplo: Kolmogorov-Smirnov, Anderson-Darling, Shapiro-Wilk e Ryan-Joiner., gráfico de normalidade).
Exemplo de gráficos de resíduos.Gráfico de resíduos com evidências de homocedasticidade e de heterocedasticidade.Histograma e gráfico de normalidade para confirmação de homocedasticidade
Mas e se verificarmos que os dados são HETEROCEDÁSTICOS, como devemos proceder?
Primeiro, esclarecendo, na validação analítica desejamos os dados sejamhomocedásticos pois isso significa que dentro da faixa de trabalho verificada podemos esperar que a quantificação possa ser realizada pela regressão linear convencional (isto inclui que é possível usar o método de ponto único, comum em laboratórios farmacêuticos, mas é necessário confirmar que o coeficiente linear é estatisticamente zero).
Se a homocedasticidade não for válida podemos listar algumas consequências:
Os erros padrões dos estimadores (coeficientes angular e linear), obtidos pelo Método dos Mínimos Quadrados, são incorretos e portanto a inferência estatística não é válida.
Não podemos mais dizer que os Estimadores de Mínimos Quadrados são os melhores estimadores de mínima variância para o coeficiente angular, embora ainda possam ser não viciados.
Assim, se a hipótese de homocedasticidade for rejeitada, para contornar a falha na suposição do modelo de regressão linear, devemos empregar o Modelo de Mínimos Múltiplos Quadrados Ponderados para determinar os estimadores (coeficientes de regressão). A ponderação é necessária pois a heterocedasticidade significa que temos “pesos” diferentes influenciando diferentemente os erros em níveis de concentração dentro da faixa linear do método.
Gráfico evidenciando níveis crescentes de erros para cada nível de concentração, ponderados para atingir a linearidade.
Para obter os estimadores de mínimos quadrados ponderados, no qual devemos considerar que cada uma das n observações podem não gerar a mesma variabilidade nos resíduos, determinamos o peso que cada observação terá sobre os estimadores, utilizamos a ideia de que o peso atribuído a uma observação é inversamente proporcional a variância do resíduo relacionado a ela, em outras palavras, consideramos que as observações que causam maior variabilidade nos resíduos têm menor confiabilidade em termos de inferência para os parâmetros da função de regressão. De maneira análoga, as observações com menor variância são mais confiáveis. Na prática, temos diversas fomas de considerarmos os pesos, caso tenhamos informação de que a variância é diretamente proporcional à variável independente (X), podemos tomar como peso 1/x.
Assim, no caso de réplicas ou quase réplicas o peso de cada ponto é calculado como o inverso da variância (em geral usamos a variância amostral).
Desta forma, no Modelo de Mínimos Quadrados Ponderados o fator de ponderação deve ser considerado no cálculo dos coeficientes do modelo (exemplo abaixo para o coeficiente angular) e para os demais testes (exemplo para parâmetros de tabela ANOVA).
Cálculo para o coeficiente angular de regressão no MMQP.Tabela com a descritiva dos cálculos de ANOVA no caso de MMQP.
Algumas observações importantes sobre MMQP
A regressão ponderada é um método que pode ser usado quando a suposição de mínimos quadrados da variância da constante nos resíduos é violada. Com o peso correto, este procedimento minimiza a soma dos resíduos quadrados ponderados para produzir resíduos padronizados com uma variância constante (homoscedasticidade). A regressão ponderada não é uma solução apropriada quando a heteroscedasticidade é causada por uma variável omitida (isto é, quando os dados dependem de outro fator não identificado no modelo).
Como escolher o peso a ser usado ?
Determinar o peso correto a ser usado pode ser uma tarefa desafiadora. O peso ideal é o valor inverso da variância do erro ( ver fórmula descrita acima). Entretanto, isso geralmente não é fácil de ser de fato calculado, sendo as vezes necessário usar outras estratégias. Algumas opções para determinar os pesos:
O inverso de um preditor ou preditor ao quadrado se a variância é proporcional a um preditor. Use a experiência combinada com a tentativa e erro para determinar o que funciona.
Valores baseados em teoria, literatura ou pesquisa anterior.
Normalmente observações com pequenas variâncias devem ter pesos relativamente grandes e observações com grandes variâncias devem ter pesos relativamente pequenos.
Exemplo:
Suponha que seu modelo de regressão prediz o número anual de acidentes de trânsito em diferentes cidades. Como as cidades mais populosas tendem a ter mais acidentes, os resíduos para cidades maiores também tendem a ser maiores. Uma abordagem para resolver isso é usar o valor inverso da população de cada cidade para determinar o peso.
Em softwares estatísticos, como o Minitab, é possível obter o gráfico de linhas ajustado para regressão linear ponderada. Neste caso, além das variáveis x e y em diferentes colunas, torna-se necessário também organizar uma terceira coluna, com valores de pesos. O gráfico a ser usado é o de dispersão, porém Y ajustado leva em consideração os valores de peso de ponderação.
No Action Stat também é possível realizar o ajuste pelo modelo de regressão ponderado. A Figura abaixo apresenta um comparativo de regressão realizada sem ponderação, mas evidenciando a heterocedasticidade e o gráfico traçado com os pesos ajustados, no modelo de regressão com ponderação. No Action Stat o peso é efetivamente calculado como inverso da variância em cada nível de concentração.
Gráfico no qual se percebe que em concentrações maiores a variância é maior.
Gráfico obtido ajustando os dados de acordo com a regressão ponderada, utilizando pesos e corrigindo as variâncias.
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Devemos nos preocupar com o volume de amostra a ser injetado e também com a massa de soluto por massa de fase estacionária a ser utilizado no HPLC.
Estes parâmetros devem ser definidos de acordo com as características da coluna a ser empregada no método de análise.
Sobrecarga de amostra na coluna (2 mg/g de fase) resulta em decréscimo de eficiência, decréscimo de retenção e aumento de cauda, mas em geral é muito difícil conhecer a massa de fase estacionária em colunas analíticas de HPLC e a tendência será sempre trabalhar com amostras bem diluídas.
Assim, volumes de injeção ótimos são diretamente relacionados com o volume da coluna, que deve ser calculada pela área transversal e comprimento da coluna:
Ilustração esquematizando como calcular o volume da coluna cromatográfica a partir de seu diâmetro e comprimento.
Para obter as melhores resoluções e eficiências devemos trabalhar com volumes ótimos de injeção de amostra.
A Figura 1 exemplifica o efeito na qualidade do cromatograma quando se trabalha com volumes excessivos de amostra.
Figura 1a e 1b. Comparativos do efeito de redução no volume de injeção de amostra permitindo obter melhores eficiências, resoluções e reduzindo a assimetria do pico cromatográfico.
O volume máximo de amostra depende: área superficial do suporte, % de recobrimento, fator de retenção dos picos, resolução, volume da coluna;
Volume máximo de injeção deve ser < 1% do volume interno da coluna vazia.
No caso de uma coluna de 2,1 mm x 5 cm:
V= π.r².L= π.(2,1/2)².50= 173 mm³ volume da coluna
V max= 0,01×173= 1,7 mm³= 1,7 µL
O volume Ideal de injeção versus dimensão da coluna
Nós podemos estimar o volume de injeção apenas com as dimensões da coluna, considerando o mesmo material de empacotamento. Nesta aproximação o diâmetro da coluna é o fator limitante.
Veja a tabela abaixo com os volumes de injeção típicos em função do diâmetro da coluna.
Diâmetro da Coluna
Volume (µL)
2,1 mm (30 -100 mm comprimento)
1-3
3,0-3,2 mm (50-150 mm comprimento)
2-12
4,6 mm (50-250 mm comprimento)
8-40
10 mm (50-250 mm comprimento)
40-100
21,2 mm (50-250 mm comprimento)
150-300
30 mm (50-250 mm comprimento)
300-700
50 mm (50-250 mm comprimento)
1000-2000
Volumes de injeção grandes podem ser aceitáveis se os picos são ainda simétricos (a vantagem é permitir melhores sensibilidades)
Compostos que eluem mais rápido irão exibir alargamento se o volume for muito alto.
Se o solvente na sua amostra é mais forte do que a fase móvel será necessário usar um volume de injeção menor.
Por outro lado, se o solvente de sua amostra for mais fraco do que a fase móvel, você poderá usar um volume maior de injeção.
Se a amostra for preparada com solvente mais forte que a FM diminui-se a eficiência e o fator de retenção;
Sempre que possível deve-se preparar a amostra em FM ou em solvente mais fraco;
Exemplo: FM com 30% de metanol, amostra deve ser dissolvida em no máximo 30% de metanol. 30% de acetonitrila não é adequado
Porque vale a pena reduzir as dimensões das colunas (comprimento e diâmetro) e tamanhos de partículas?
Principalmente porque a melhor resolução e eficiência obtidas permitem reduzir os tempos de análise e economizar fase móvel também.
O comparativo abaixo foi calculado utilizando uma ferramenta disponibilizada pela Sigma Aldrich. Na simulação se evidencia a economia de tempo e solvente de acordo com a redução de comprimento (de 15 para 5 cm), diâmetro de coluna (de 4,6 para 2,1 mm) e tamanho de partícula (de 5 para 3 µm) e a correspondente redução no volume de injeção (de 20 para 1,4 µL).
Ferramenta da Sigma Aldrich que permite calcular os respectivos volumes de injeção, vazão de fase móvel e outros ajustes de acordo com a mudança de dimensões da coluna cromatográfica e partícula de fase estacionária, evidenciando a economia de tempo de análise e solvente (https://www.sigmaaldrich.com/analytical-chromatography/hplc/method-transfer-calculator.html)
Portanto, na transferência de métodos de HPLC para UHPLC, utilizando colunas de menores diâmetros e comprimentos deve-se lembrar de calcular os respectivos volumes de injeção adequados, para permitir a obtenção dos melhores resultados e o volume de injeção acaba sendo também importante no desenvolvimento de métodos na tentativa de alcançar as melhores performances.
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A importância da Fase Móvel (FM) no processo de separação pode ser comprovada através da análise da equação geral de resolução, Rs, na qual dois dos três parâmetros cromatográficos envolvidos (número de pratos ou eficiência, N, o fator de retenção, k, e o fator de seletividade (separação), α, são fortemente influenciados pela FM.
Fórmula de resolução cromatográfica mostrando a influência da eficiência, seletividade e fator de retenção.
Dessa forma, a seleção de uma FM para uma dada separação é extremamente relevante.
A força cromatográfica mede a capacidade da FM em interagir com os componentes da amostra. Essa interação pode ser por meio de forças de Van der Walls (dispersivas ou de London e as dipolo-dipolo de Keesom e Debye), além de ligações de hidrogênio ou forças dielétricas.
Todos esses tipos de interação podem ser agrupados no parâmetro polaridade do solvente – denominada série eluotrópica. A série eluotrópica é organizada de acordo com a polaridade e permite escolher o melhor solvente que será mais competitivo em relação a característica da fase estacionária. Se a fase estacionária for apolar o solvente mais forte será o mais apolar, se a fase estacionária for polar o solvente mais forte será o mais polar. A mistura de 2 ou mais solventes irá permitir controlar a força resultante da fase móvel.
Tabela de força de eluição de solventes, indicando a ordem de polaridade, e comprimento de onda de corte no UV,
Quando pensamos no emprego de certo solvente em um tipo específico de cromatografia, isto é, de fase reversa ou normal, temos a classificação do fator força peso do solvente (S) para definir a escolha do solvente sem relação a nossa necessidade de “força” necessária em uma dada separação. A Tabela a seguir fornece a polaridade do solvente em relação à cromatografia de partição em fase reversa e normal.
Tabela de força peso considerando fase reversa e fase normal.
Observando o valor de força peso, verificamos que é possível trabalhar com uma porcentagem maior de metanol do que de acetonitrila, para obter a mesma força cromatográfica e uma porcentagem menor de THF para obter essa força (considerando uma fase móvel com mistura binária solvente/água).
Nomograma comparando a proporção necessária para obter aproximadamente a mesma força considerando acetonitrila, metanol e tetrahidrofurano (THF).
O Nomograma acima mostra as % em volume de solvente tendo a mesma força eluente. Uma linha vertical intercepta cada linha de solvente no mesmo valor de força eluente.
A retenção de um componente é controlada pela força do solvente. Solventes fortes diminuem a retenção e solventes fracos aumentam a retenção.
A força cromatográfica da FM adequada para uma separação é selecionada através da análise do fator de retenção, k.
Um valor de k baixo significa pouca interação dos solutos com a fase estacionária. Por outro lado, um valor de k elevado implica forte interação entre o soluto e a FE. Nenhum extremo é recomendado, seja por fornecerem separações pouco eficientes seja por implicar em tempos de análises longos, com alargamento dos picos. O intervalo ideal do fator de retenção é 1 ≤ k ≤ 10; entretanto, para análises de múltiplos componentes, também se aceita 0,5 ≤ k ≤ 20.
A força cromatográfica ótima para uma separação é, em geral, selecionada empiricamente por tentativa e erro, como exemplificado abaixo. Porém, atualmente, muitos empregam o QbD para uma abordagem mais sistemática de otimização de FM e método cromatográfico.
Em geral, inicia-se a separação da amostra usando-se uma fase móvel de força cromatográfica elevada, de modo que todos os componentes eluam com tempo de retenção semelhante ao de um composto não retido, tM (t0).
A seguir, sucessivamente, vai-se diminuindo a força cromatográfica da FM até conseguir que o valor de k de todos os componentes esteja compreendido no intervalo ideal.
Exemplos:
Vemos na figura a diminuição da força cromatográfica favorecendo o aumento do fator de retenção (K) e permitindo aumentar a resolução entre os picos (Rs).Na figura vemos o primeiro cromatograma obtido com uma FM de elevada força cromatográfica e não ocorre a separação. As demais figuras ilustram diferentes tentativas de ajustar a força, reduzindo-a e utilizando diferentes solventes na tentativa de obter uma separação ideal de todos os picos (considerando somente eluição isocrática).Figura ilustrando o esquema de aumento de força de acordo com a polaridade, para a eluição por fase reversa e para fase normal.Exemplo de ajuste de força cromatográfica devido ajuste na proporção de solvente orgânico e do tipo de solvente. O último cromatograma mostra uma mistura ternária permitindo obter a melhor resolução entre todos os picos, conciliando seletividade e força dos solventes.
Quando nenhuma possibilidade de ajuste de solventes de fase móvel, considerando eluição isocrática, funciona para obter a resolução ideal entre todos os picos, torna-se necessário considerar o uso do gradiente se entre os compostos existem os de baixa afinidade pela fase estacionária e também outros de grande afinidade pela fase estacionária. Além disso, por vezes, a mudança de seletividade da coluna poderá ser a saída mais adequada.
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No Brasil a importação de extratos medicinais de Cannabis foi regulamentada pela Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA) através da RDC Nº 17/2015 após o Conselho Federal de Medicina (CFM), Resolução RE Nº 2.113/2014, autorizar a prescrição compassiva de canabidiol para tratamento de epilepsias refratárias aos tratamentos convencionais. Em 2016 a ANVISA incluiu na autorização de importação para uso médico pessoal, através da RDC 66/2016, a planta Cannabis sativa L., partes da planta e de seus compostos, incluindo o THC. Um ano depois foi registrado no Brasil o medicamento Mevatyl®, indicado para controle da espasticidade na esclerose múltipla, constituído por extrato hidroalcoólico de Cannabis sativa L. contendo 27 mg mL-1 de THC e 25 mg mL-1 de CBD, além de outros canabinoides minoritários e terpenos.
Diversos compostos formados no metabolismo secundário desta planta são de interesse farmacológico, especialmente os canabinoides (terpenofenólicos). Os compostos majoritários são o ácido tetrahidrocanabinólico (THCA) e ácido canabidiólico (CBDA), que quando convertidos às suas formas neutras tetrahidrocanabinol (THC) e o canabidiol (CBD), apresentam efeitos farmacológicos paradoxais no Sistema Nervoso Central. O THC é psicoativo com propriedades euforizantes, enquanto o CBD é depressor com propriedades anticonvulsivante e ansiolítica. O THC ainda apresenta efeito antiemético e analgésico e o CBD efeito antipsicótico e anti-inflamatório.
A Figura 1 apresenta os principais canabinóides de interesse em produtos farmacêuticos e que necessitam de controle de qualidade.
Figura 1. Principais canabinoides de interesse farmacológico e que necessitam de controle de qualidade
Métodos por cromatografia gasosa (CG) e CLAE são descritos na literatura para determinação de canabinoides em diferentes matrizes, além de outros métodos ainda pouco difundidos como a cromatografia em fluido supercrítico. Também se associa métodos de TLC?HPTLC para obtenção de perfis cromatográficos dos extratos vegetais.
Os métodos por CG, apesar de rápidos, robustos e muito eficientes, requerem derivatização dos canabinoides ácidos pois o CG necessita de volatilidade e substâncias termicamente estáveis, pois opera com altas temperaturas para favorecer a separação e os canabinoides ácidos não atendem essa condição, necessitando de transformação química. A derivatização introduz erros, pois representa uma reação adicional prévia a análise, sendo essa um desvantagem associada ao CG.
Assim, quando a análise de canabinoides se destina ao controle de qualidade de produtos farmacêuticos e suplementos alimentares, os métodos por HPLC representam a melhor alternativa de análise, pois permitem a análise simultânea dos canabinoides ácidos e neutros, permitindo o controle de qualidade de extratos vegetais de Canabis sativa. A Figura 2 e 3 apresentam exemplos de cromatograma obtido por HPLC e CG, respectivamente.
Figura 2. Cromatograma obtido por HPLC para canabinoides.Perfil cromatográfico de canabinoides obtidos por CG: maior eficiência e resolução, porém necessidade de derivatização.
O método a ser empregado precisa considerar a análise de CBD e THC para controle e proteção de fatores de saúde pública. Em vários países a presença de THC em produtos medicinais de Canabis é considerado proibido, sendo então o THC uma impureza que precisa ser controlada rigidamente.
A Tabela 1 apresenta algumas opções de métodos empregando a CG e a Tabela 2 destaca as principais condições a serem consideradas.
Tabela 1. Algumas opções de métodos por CG para análise de canabinoides.Tabela 2. Condições importantes a serem consideradas no método por CG.
Canabinóides com grupos carboxílicos e descarboxilados podem ser detectados em cromatografia líquida em 228 nm, apesar da sensibilidade dos detectores UV e PDA serem menores do que outros.
A Tabela 3 apresenta algumas opções de métodos empregando a cromatografia líquida para análise de canabinoides.
Tabela 3. Algumas opções de métodos por HPLC para análise de canabinoides.
Assim, a cromatografia líquida acoplada a espectrometria de massas (LC-MS) e a técnica tandem (LC-MS/MS) permitem desempenhos de destaque em termos de melhoria de seletividade e sensibilidade. Porém, é necessário o uso de padrões na forma de isótopos estáveis para permitir um melhor resultado quantitativo e melhores exatidões, contornando efeitos matriz. Entretanto, padrões deuterados de poucos canabinóides estão comercialmente disponíveis, como: THCA-d3, CBD-d3, THC-d3 e CBN-d3. Os padrões puros de canabinóides carboxilados tendem a ser instáveis em solução.
Em relação a técnica de ionização, tanto o eletrospray (ESI) quanto a ionização química a pressão atmosférica (APCI) podem ser usadas como interface no LC-MS, porém, em geral, somente gera-se as moléculas protonadas, sendo necessário o uso do LC-MS/MS para melhorar as características confirmatórias do método. Além disso, como os canabinóides contendo os grupos fenólicos e carboxílicos não são eficientemente ionizados por ESI e APCI, a sensibilidade da técnica de LC-MS é reduzida quando comparado com o método empregando a GC-MS.
A Tabela 4 apresenta um comparativo entre o limite de detecção e quantificação das diferentes técnicas de HPLC e GC para análise de canabinóides.
Tabela 4. Comparativo de desempenho dos métodos de HPLC e GC.
Os desafios ainda são recentes e como para qualquer amostra, devemos investir em desenvolvimento de métodos. Porém, os recursos e tecnologia hoje nos permitem muitas opções promissoras de estabelecer condições realmente seguras para o uso desta planta que apresenta tantas propriedades intrigantes e poderosas.
As técnicas cromatográficas, como o HPLC, são técnicas analíticas indiretas. Isso significa que necessitam de padrões de concentração conhecida para calibração e determinação de uma equação que descreva a relação entre o sinal analítico e a concentração (y= f(x)).
Avaliação da linearidade para a correlação entre y e x (y=f(x)).
Sem que se estabeleça uma equação confiável não se torna confiável também determinar a concentração de amostras desconhecidas.
A calibração deve ser feita com padrões da própria substância a ser analisada, pois a maioria dos detectores tem sinais Analíticos que dependem da estrutura química, o que causa erros, podendo-se considerar a análise, nesta situação, como semi-quantitativa (em algumas quantificações de impurezas isso ocorre devido a ausência de padrões).
As calibrações podem ser externas, internas ou do tipo adição de padrão.
Calibração externa: soluções de padrões são injetadas e as áreas são obtidas para determinar a correlação x e y.Calibração por adição de padrão: a solução de padrões são adicionadas a soluções contendo uma quantidade de amostra.Calibração interna: outra substância (padrão interno) é adicionado em todas as soluções, tanto de amostras quanto de padrões e a relação de área do pico do analito e do padrão interno é usada para traçar a curva de calibração.
A calibração por adição de padrão é essencial quando a matriz é complexa e interfere na resposta analítica. Sempre será importante determinar a faixa linear das curvas de calibração.
As técnicas cromatográficas são de suma importância nas diferentes áreas industriais e acadêmicas. Dentre os tipos de cromatografia, a cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC) com certeza se destaca como a técnica mais versátil e portanto a de maior aplicação.
Porém, para obter uma boa condição de análise os métodos de HPLC necessitam de estudo e desenvolvimento. Condições de preparo de amostra, melhor coluna/fase estacionária, fase móvel, volume de injeção, detectores, entre outros, são alguns parâmetros a serem definidos para permitir separação eficiente e quantificação exata.
Por onde iniciar quando não temos uma referência de método completo?
1 – Pesquisa Bibliográfica:
Obter informações sobre o Analito e sobre a amostra. Principais perguntas: A) O que eu preciso analisar absorve no UV ? Se não, terei que verificar outro detector. Se sim, qual o melhor comprimento de onda?
Exemplo de espectro de absorção com 2 máximos: um no comprimento de onda de 255 nm e outro na região do visível, em 395 nm. Com a detecção nos máximos de absorção é possível obter as melhores sensibilidades.
B) Qual é o melhor solvente/ preparo de amostra? É necessário extração? Pré concentração?
C) qual pka? Teremos que ajustar o pH ou trabalhar com par iônico? Troca iônica? (no caso de estar dissociada na forma de íons).
D) Qual logP dos solutos?
Com esta informação podemos definir qual tipo de separação será melhor: – fase reversa: log P entre 5 a quase zero- fase normal: log P entre 0 e -1- HILIC: log P entre -1 a -4- troca iônica: log P menor que -4
B) sabendo qual o melhor tipo de separação podemos definir o tipo de FE a ser utilizada e já definiremos as características da FM compatível (que também tem que ser compatível com a amostra: deve-se testar a solubilidade).
Tipos de solventes para fase reversa e fase normal e triângulo de seletividade.
C) a escolha da coluna, após escolher o tipo de FE, irá depender da rapidez desejada e eficiência necessária. Se houverem muitos picos a serem separados vale a pena investir em uma coluna de menor diâmetro e menor tamanho de partícula (mais caras). Se o equipamento disponível for um UHPLC é possível trabalhar com coluna ainda mais eficientes (diâmetros e tamanho de partícula da ordem de 2 mm e 1,3 um, respectivamente).
Exemplos de algumas dos mais usados tipos de fases estacionárias.Opções modernas de FE.Exemplo da influência de algumas variáveis geométricas de colunas e eficiência obtida.Alternativas mais modernas de FE.
Com certeza a modernização das fases estacionárias e colunas fez com que o HPLC/UHPLC conseguisse atingir novos patamares e permitiu se destacar em vários desafios, mas também tornou o desenvolvimento dos métodos mais delicado e com maior necessidade de estudo.
Outras definições de condições analíticas, como: vazão de fase móvel, temperatura e volume de injeção merecem atenção, mas acabam sendo definidas também de acordo com as características das e FE.
Precisa de ajuda no desenvolvimento? Gostaria de se aperfeiçoar nesta área?
Com as recentes discussões sobre a aprovação, ou não, das vacinas direcionadas para combater a pandemia causada pelo COVID-19, evidenciou-se de forma singular a atuação e importância da ANVISA (Agência Nacional de Vigilância Sanitária) na manutenção e defesa da saúde pública.
Entre as diferentes atuações administrativas da ANVISA, o controle de registro de Insumos Farmacêuticos Ativos (IFA) direcionados para a produção de novos produtos farmacêuticos.
Além das inerentes preocupações em garantir a correta ação farmacológica, a qualidade, segurança e eficácia norteiam os trabalhos e a elaboração da documentação que deve comprovar que o IFA/produto acabado podem ser disponibilizados.
Um portal em particular, o COIFA (desenvolvido pela Coordenação de Registro de Insumos Farmacêuticos Ativos) auxilia muito e permite direcionar os esforços das indústrias farmacêuticas na correta direção da elaboração dos melhores dossiês para análise.
Através do COIFA da ANVISA é possível verificar as principais RDC que norteiam a elaboração da documentação de registro, guias internacionais relacionados (como os guias do ICH), farmacopeias que descrevem as monografias e métodos a serem empregados e auxilia na verificação de limites a serem estabelecidos em especificações de controle de qualidade dos IFA/produtos acabados.
Neste portal ainda é possível acompanhar o andamento de processos submetidos e quais produtos estão regulares, ou não, frente ao registro na ANVISA.
Assim, o COIFA desempenha um papel interessante para os profissionais que atuam no desenvolvimento de produtos farmacêuticos e registro dos mesmos, mas também viabiliza que o público em geral possa ter conhecimento sobre aspectos regulatórios.
Pensando em divulgar este portal, preparei uma pequeno vídeo sobre a utilização destas ferramentas.
Os primeiros equipamentos de CG foram colocados no mercado na década de 40 e 50. Desde essa época, várias melhorias foram introduzidas e hoje pode-se considerar que a CG é uma técnica “madura” da qual se espera poucos avanços tecnológicos. O acoplamento com a espectrometria de massas também já está bem consolidado, completando o nível elevado de performance da técnica. Alguns pontos de melhoria significativos são bem vindos, mas se encontram além da interface do equipamento e são o desenvolvimento de fases estacionárias mais resistentes e flexíveis e preparos de amostra mais rápidos e eficientes.
Em 1991 foi descrita a técnica de GCxGC: cromatografia a gás bidimensional abrangente, com um poder diferencial de solucionar problemas complexos de separação. O professor John B. Phillips introduziu esta técnica que desde então tem sido extensivamente explorada, mas que ainda é desconhecida por muitos.
A GCxGC é caracterizada pela utilização sequencial de duas colunas cromatográficas, uma convencional e a outra curta (do tipo de coluna usada para “fast-GC”), de forma que todo o efluente da primeira coluna ou uma parte representativa do mesmo é conduzido para a segunda através de um modulador. O sistema de modulação entre as duas colunas causa uma compressão da banda cromatográfica que elui da primeira coluna, e esta banda é direcionada para a coluna curta, de forma que a separação na segunda coluna é extremamente rápida. Os períodos de modulação devem ser ajustados a fim de que sejam compatíveis com o tempo de separação na segunda coluna, minimizando o alargamento da banda comprimida. Desta forma, a sensibilidade é significativamente incrementada (relação sinal/ruído aproximadamente 10 vezes maior) e a resolução aumenta de forma expressiva, se comparada à cromatografia gasosa monodimensional (1D-GC, “One-Dimensional Gas Chromatography”). A combinação de duas colunas cromatográficas com mecanismos de separação ortogonais entre si leva a um significativo aumento de seletividade.
Esquema do equipamento de GCxGC.
Tais características tornam esta técnica extremamente útil para análise de amostras complexas, ou amostras que apresentem outras características que limitam sua caracterização por 1D-GC, como no caso das separações enantioméricas. Embora a GCxGC tenha apenas 13 anos, vários moduladores já foram desenvolvidos. Inicialmente, eram utilizadas válvulas ou inserção direta na segunda coluna. Entretanto, a fim de focalizar os analitos em bandas estreitas, tornou-se necessário utilizar gradientes térmicos, seja através de temperaturas elevadas, acelerando-se a eluição do soluto dentro de uma banda estreita (abordagem de varredura térmica – “thermal sweeper”), seja através de sistemas criogênicos, retardando-se a eluição dos analitos e causando um aprisionamento “on-column”, ou estreitamento das bandas. O primeiro sistema modulador criogênico foi chamado de sistema criogênico longitudinalmente modulado (LMCS, “Longitudinally Modulated Cryogenic System”). Outro sistema modulador deste tipo utiliza dois jatos criogênicos a fim de focalizar os compostos em duas regiões próximas da coluna capilar, para separar os eventos de aprisionamento e remobilização da amostra. Estes dois últimos moduladores descritos são os mais utilizados atualmente.
Exemplo de equipamento: Ao acionar o modulador um jato de gás nitrogênio refrigerado é projetado sobre uma pequena área do modulador. Durante certo período, a banda cromatográfica sofre um efeito de compressão/estreitamento devido à ação da baixa temperatura, fazendo com que os analitos sejam concentrados neste local da coluna. Em seguida, o fluido criogênico cessa e o modulador libera a banda cromatográfica e esta é introduzida na segunda coluna. A liberação ocorre pela incidência de um jato quente na mesma região. Neste sistema todo o efluente da primeira coluna é transferido para a segunda e, por isso, a técnica é também chamada de abrangente ou compreensiva, sendo que as análises da primeira e segunda dimensão se processam simultaneamente e o tempo total de análise equivale ao tempo empregado na análise monodimensional (https://www.shimadzu.com.br/analitica/produtos/gc/gcxgc-qms.shtml). Resultados obtidos com a GCxGC.
Os resultados obtidos por GCxGC as vezes podem ser difíceis de interpretar e diferentes pesquisadores escolhem diferentes formas de representar os dados obtidos (exemplo 1). Uma opção são os gráficos de contorno, como no exemplo 2 abaixo.
GcxGC Analyzer
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No dia 22 de outubro a Gerência de Avaliação da Qualidade de Medicamentos Sintéticos (GQMED) da ANVISA ofereceu um Webinar para discutir os principais motivos de exigênca e indeferimento no processo de registro e de pós registro de medicamentos sintéticos.
Repetindo aproximadamente o mesmo perfil levantado anteriormente em 2015, os dados mostram que os relatórios de validação estão em destaque, seguidos de relatórios de estabilidade e produtos de degradação e controle de qualidade.
*outros incluem itens diversos, mas com menos de 10 itens relacionados
Os principais motivos que fazem com que a validação seja um dos principais pontos de exigências e indeferimento, envolvem documentos faltantes/ausentes ou não cumprimento em prazos de resposta de itens relacionados com a qualidade.
No caso da validação de métodos os principais pontos apontados foram:
Não apresentar validação / ou validação parcial: a validação é sempre necessária, mesmo quando o método é farmacopeico (apenas métodos muito simples, como pH e solubilidade são exceções). Métodos desenvolvidos em outra empresa ou local devem apresentar validação parcial e transferência.
Divergências apresentadas no relatório de validação em relação a parâmetros do método de controle de qualidade (diferentes colunas, preparo de amostras e etc): a ANVISA considera uma falta de organização a empresa apresentar divergências entre versões de métodos enviados nos dossiês.
Ausência de relatório de caracterização de Substâncias Químicas de Referências (SQR): quando se utiliza “padrões” não compendiais é necessário SEMPRE anexar o relatório de caracterização que comprove a identidade e qualidade da substância.
Envios de validação de métodos quantitativos, como os que utilizam HPLC e CG para impurezas, como se fossem Ensaios Limites: métodos quantitativos sempre necessitam de validações incluindo precisão, exatidão linearidade e LQ (se forem de impurezas). Alguns métodos colorimétricos e, eventualmente, TLC podem ser considerados ensaios limites.
Não apresentar dados de pureza de picos: deve-se usar o software do equipamento para calcular o purity angle e o threshold (pico puro = purity angle< threshold angle). A pureza deve ser maior ou igual a 0,99 e resultados de 0,90 a 0,99 devem ser especificamente justificados, os cromatogramas e resultados devem ser incluídos e a falta de pureza requer reavaliação do método. SELETIVIDADE acaba sendo o item com maior exigências.
Não avaliar a seletividade do método em relação a impurezas desconhecidas: mudanças de perfil de impurezas devem ser investigadas, deve-se evidenciar a injeção de impurezas conhecidas e seus tempos de retenção, deve-se incluir um system suitability com controle de resolução para casos de resolução complicada. SELETIVIDADE acaba sendo o item com maior exigências.
Considerar um limite aceitável inadequado para interferências, por exemplo de 2 % para placebo. Tais limites poderiam ser justificáveis somente no caso de dissolução por UV, mas para métodos cromatográficos são inaceitáveis. SELETIVIDADE acaba sendo o item com maior exigências.
Enviar a seletividade sem a degradação forçada: deve-se atender o descrito na RDC 166/2017 e a RDC53/2015.
Enviar a linearidade com faixa inadequada: teor 80 a 120%, uniformidade 70 a 130%, 50 a 150% é aceitável. Especial atenção deve ser dada no caso de métodos que monitoram teor e impurezas ao mesmo tempo, pois estes devem ter um faixa linear inteira – deve-se incluir mais pontos, se necessário, ou usar o ativo mais diluído. Se não houver linearidade deve-se considerar alterar o modo de calibração externa.
Definir o fator resposta inadequadamente: deve-se utilizar a linearidade, em especial o coeficiente angular e no caso de revalidação este item deve também ser revisto.
Utilizar réplicas na precisão e exatidão não verdadeiras: as replicatas devem ser preparadas desde a pesagem: utilizar a mesma solução mãe não é aceitável na maior parte das ocasiões.
Apresentar limites incoerentes para precisão e exatidão: se a especificação de IFA for 98-102% não é adequado um DPR de 5% (especificações de 95-105% também não seria); métodos de HPLC que só incluem pesagem e preparos simples devem ter limites de 2%. O critério de aceitação deve ser baseado em: concentração de analito (menores concentrações, maiores DPR aceitáveis), técnica e especificação.
Não apresentar precisão e exatidão no limite de quantificação. Critérios para precisão e exatidão podem ser diferentes neste ponto, se justificável
Apresentar LQ incoerentes com limites de notificação e identificação (RDC 53/2015). LQ deve ser menor ou igual a estes limites e se a RDC 53/2015 não é aplicável o LQ deve ser no mínimo 50 % do limite de especificação. Verificar a sensibilidade adequada para avaliar a estabilidade.
A validação deve ser feita antes da estabilidade.
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